5、gpc测试流程
gpc测试流程
一、进空白样之前：
仪器开关打开，进样器流速从0以0.1的速度升至1 ml/min（注意改变泵的流速时，以每次±0.1的幅度变动，每变动一次，需稳定电压值）；调检测器sensitivity16,温度35℃，按shift+1启动，然后按auto zero，使其值的变化稳定在±10，约需1 h。关掉shift+1，按auto zero，使其值的变化稳定在±10。
二、进空白样：
打开进样伐，命名，选择宽分布进样（每次都需重新选择一下）。出现等待进样，注射空白样（chcl3），扭动进样伐从load位置至inject位置，样品检测30 min。
三、进未知样（即所测样品）：
关进样伐，弃0.2 µm滤头（绿色），用洗样水（chcl3）洗注射器3次，取已用0.45 µm滤头（白色）过滤的样品0.5 ml，加0.2 µm滤头，先挤出几滴样品液，注射器内尽量无气泡，然后进未知样测量，步骤同进空白样。
四、数据拷贝：
1、查询数据→通道，更新（双击）,选择样品单击右键，改变样品为宽分布未知样，保存→文件→打开→处理方法→chcl3+日期（选择最新日期）→拉线（选峰位置），点击定量（左上角蓝色按钮）→文件→保存，全部。
2、查询数据→结果，更新→选择样品，数据库→导出数据→命名后加-（短-），保存。
3、选择样品→预览→确定→保存。
五、关仪器：
流速从1 ml/min以-0.1的速度降至0，每变动一次需稳定电压值，关闭开关按钮。
常用动物模型
一、桡骨缺损模型：
实验动物：新西兰兔或日本大白兔
实验操作：
1. 动物麻醉：生理盐水与鹿眠灵按照1:24 稀释25倍后，约0.6-0.8ml/kg剂量肌肉注射。
2. 兔桡骨缺损模型的建立：
（1）双侧前肢备皮后，将兔置于腹卧位，四肢外展固定于手术台上，强力碘消毒双侧前肢，铺无菌巾。
（2）沿前臂桡骨中下段纵切长约3-3.5cm的切口，钝性分离皮下组织、筋膜、肌肉；
（3）分离切开骨膜后，沿骨膜下分离暴露桡骨；
（4）以距桡骨远端约1cm为远端切割点，往近侧20mm为近端切割点，画样并切割；
（5）取出桡骨中下段20mm 的节段性骨缺损，修整肢体两侧断端并压迫止血。
3. 材料植入：
（1）缺损处经生理盐水冲洗，去除血凝块。
（2）将不同组别的材料分别植入缺损处，注意材料与骨断端处应无肌肉或其他软组织嵌入。
（3）空白对照组为缺损不作任何处置。
（4）分层缝合创口，对合皮肤，强力碘消毒。
（5）在术后1周内，每只兔每天肌注青霉素40万单位。
注意事项：
1.钝性分离时，尽可能不破坏皮层及肌层的静脉血供，注意避免伤及动脉。
2.电钻磨取骨缺损时，将周围骨膜一并摘取。
3.实验动物须随机分组，每只兔左右桡骨分别植入不同材料，最好交叉设计。
二、颅骨缺损
（待续...）
三、胫骨平台缺损
（待续...）