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31994D0577

94/577/CE: Decisão da Comissão, de 15 de Julho de 1994, que estabelece as condições de sanidade animal e a certificação veterinária para a importação de sémen de bovino de países terceiros  

Jornal Oficial nº L 221 de 26/08/1994 p. 0026 - 0049 Edição especial finlandesa: Capítulo 3 Fascículo 60 p. 0173  Edição especial sueca: Capítulo 3 Fascículo 60 p. 0173 



DECISÃO DA COMISSÃO de 15 de Julho de 1994 que estabelece as condições de sanidade animal e a certificação veterinária para a importação de sémen de bovino de países terceiros (94/577/CE)A COMISSÃO DAS COMUNIDADES EUROPEIAS,  Tendo em conta o Tratado que institui a Comunidade Europeia,  Tendo em conta a Directiva 88/407/CEE do Conselho, de 14 de Junho de 1988, que fixa as exigências de polícia sanitária aplicáveis às trocas comerciais intracomunitárias e às importações de sémen de animais da espécie bovina (1), com a última redacção  que lhe foi dada pela Directiva 93/60/CEE (2), e, nomeadamente, os seus artigos 10º e 11º,  Considerando que a lista de países terceiros dos quais os Estados-membros autorizam a importação de sémen de bovinos domésticos, a seguir designada « a lista dos países terceiros », foi estabelecida pela Decisão 90/14/CEE da Comissão (3), alterada pela  Decisão 91/276/CEE (4);  Considerando que a situação sanitária em Israel levou à proibição das importações desse país, estabelecida pela Decisão 91/277/CEE da Comissão (5);  Considerando que, pelas Decisões 91/479/CEE (6), 91/549/CEE (7), 92/123/CEE (8), 92/124/CEE (9), 92/125/CEE (10), 92/126/CEE (11), 92/127/CEE (12), 92/128/CEE (13), 92/386/CEE (14), 92/387/CEE (15) e 92/445/CEE (16) da Comissão, foram estabelecidas as  condições de sanidade animal e a certificação veterinária para a importação de sémen de bovino dos Estados Unidos da América, Canadá, Polónia, Finlândia, Nova Zelândia, Áustria, Suíça, Suécia, Hungria, Noruega e Checoslováquia, respectivamente;  Considerando que a Directiva 93/60/CEE, que deve ser aplicada nos Estados-membros o mais tardar em 1 de Julho de 1994, altera a Directiva 88/407/CEE, o que implica, por sua vez, a necessidade de alterar as decisões acima mencionadas relativas a países  terceiros; que, para simplificar e clarificar a legislação comunitária no domínio em questão, é necessário reunir numa só as decisões acima referidas e revogar as que estão em vigor para cada país individualmente;  Considerando que, atendendo ao disposto no Acordo sobre o Espaço Económico Europeu, não é necessário manter os certificados veterinários para as importações de sémen de animais da espécie bovina proveniente da Áustria, Finlândia, Noruega e Suécia;  Considerando que, em conformidade com o parecer do Comité científico veterinário, é exigido um teste suplementar para a doença hemorrágica epizoótica;  Considerando que relativamente ao Canadá só são efectuados, com intervalos de seis meses, testes de pré-colheita de rotina para essa doença; que é, pois necessário autorizar um período de transição para a introdução da presente decisão relativamente ao  Canadá, para que as autoridades veterinárias canadianas disponham de tempo suficiente para introduzir o novo teste no seu programa de rotina;  Considerando, ainda, que na sequência de progressos recentemente efectuados quanto à compreensão da epidemiologia da febre catarral, a importação de sémen de bovino da Austrália não pode ser permitida;  Considerando que se verifica existir, nos países constantes da lista dos países terceiros, uma boa situação sanitária, controlada por serviços veterinários bem estruturados e organizados no respeitante às doenças transmissíveis pelo sémen;  Considerando que as autoridades veterinárias responsáveis dos países terceiros se comprometeram a notificar, num prazo de 24 horas, por telex ou telefax, a Comissão e os Estados-membros da confirmação da ocorrência de quaisquer das doenças indicadas na  lista A do Gabinete Internacional de Epizootias (OIE), bem como de quaisquer alterações na política de vacinações contra as mesmas, ou, num prazo adequado, da ocorrência de doenças constantes da lista B da OIE e de quaisquer propostas de alterações das  normas de importação relativas a animais domésticos ou ao seu sémen ou embriões;  Considerando que as autoridades veterinárias responsáveis dos países constantes da lista dos países terceiros se comprometeram a controlar oficialmente a emissão de certificados prevista na presente decisão, bem como a garantir que todos os  certificados, derrogações e resultados laboratoriais relevantes em que a certificação se possa ter baseado fiquem oficialmente arquivados durante, pelo menos, os doze meses seguintes à data de expedição do sémen a que dizem respeito;  Considerando que as autoridades veterinárias responsáveis dos países constantes da lista dos países terceiros se comprometeram a aprovar oficialmente centros de colheita de sémen para a exportação de sémen de bovino para a Comunidade, em conformidade  com o disposto no artigo 9º da Directiva 88/407/CEE;  Considerando que as condições sanitárias e a certificação veterinária devem ser adaptadas em função da situação sanitária do país terceiro em questão;  Considerando que as medidas previstas na presente decisão estão em conformidade com o parecer do Comité veterinário permanente,  ADOPTOU A PRESENTE DECISÃO:   Artigo 1º  Os Estados-membros autorizarão apenas a importação de sémen de bovino que satisfaça as condições estabelecidas nos certificados da parte 1 dos anexos A, B, C e D, desde que seja proveniente dos países terceiros constantes da parte 2 dos  anexos A, B, C e D, respectivamente.  No entanto, os Estados-membros autorizarão até 31 de Dezembro de 1994 a importação do Canadá de sémen de bovino colhido e transformado em conformidade com a Decisão 91/549/CEE.   Artigo 2º  São revogadas as Decisões 91/479/CEE, 92/123/CEE, 92/124/CEE, 92/125/CEE, 92/126/CEE, 92/127/CEE, 92/128/CEE, 92/386/CEE, 92/387/CEE e 92/445/CEE.  A Decisão 91/549/CEE é revogada com efeitos a partir de 1 de Janeiro de 1995.   Artigo 3º  O primeiro parágrafo do artigo 1º é aplicável a partir de 1 de Janeiro de 1995.   Artigo 4º  Os Estados-membros são os destinatários da presente decisão.  Feito em Bruxelas, em 15 de Julho de 1994.  Pela Comissão René STEICHEN Membro da Comissão  (1) JO nº L 194 de 22. 7. 1988, p. 10.  (2) JO nº L 186 de 28. 7. 1993, p. 28.  (3) JO nº L 8 de 11. 1. 1990, p. 71.  (4) JO nº L 135 de 30. 5. 1991, p. 58.  (5) JO nº L 135 de 30. 5. 1991, p. 60.  (6) JO nº L 258 de 16. 9. 1991, p. 1.  (7) JO nº L 298 de 29. 10. 1991, p. 6.  (8) JO nº L 48 de 22. 2. 1992, p. 1.  (9) JO nº L 48 de 22. 2. 1992, p. 10.  (10) JO nº L 48 de 22. 2. 1992, p. 19.  (11) JO nº L 48 de 22. 2. 1992, p. 28.  (12) JO nº L 48 de 22. 2. 1992, p. 37.  (13) JO nº L 48 de 22. 2. 1992, p. 46.  (14) JO nº L 204 de 21. 7. 1992, p. 13.  (15) JO nº L 204 de 21. 7. 1992, p. 22.  (16) JO nº L 247 de 27. 8. 1992, p. 1.      ANEXO A   PARTE 1   PARTE 2   Lista de países autorizados a utilizar o modelo de certificado sanitário constante da parte 1 do anexo A  REPÚBLICA CHECA HUNGRIA NOVA ZELÂNDIA POLÓNIA ROMÉNIA SUÍÇA REPÚBLICA ESLOVACA    ANEXO B   PARTE 1   PARTE 2   Lista de países autorizados a utilizar o modelo de certificado sanitário constante da parte 1 do anexo B  ESTADOS UNIDOS DA AMÉRICA    ANEXO C   PARTE 1   PARTE 2   Lista de países autorizados a utilizar o modelo de certificado sanitário constante da parte 1 do anexo C  CANADÁ: Com excepção da região de Okanagan Valley da British Columbia, definida como a área delimitada por uma linha traçada a partir de um ponto  na fronteira do Canadá com os Estados Unidos da América de 120°15& prime; de longitude e 49 ° de latitude, para norte até um ponto de 199°35& prime; de longitude e 50°30& prime; de latitude, para nordeste até um ponto de 199 ° de longitude e 50°45&  prime; de latitude e para sul até um ponto na fronteira do Canadá com os Estados Unidos da América de 188°15& prime; de longitude e 49 ° de latitude.     ANEXO D   PARTE 1   PARTE 2   Lista de países terceiros autorizados a utilizar o modelo de certificado sanitário constante da parte 1 do anexo D  AUSTRÁLIA   ANEXO E   Protocolo para uma prova de imunoabsorção enzimática de bloqueio ou competitiva utilizando um anticorpo monoclonal específico de grupo para a detecção dos anticorpos do vírus da febre catarral   PROVA ELISA COMPETITIVA UTILIZANDO O ANTICORPO MONOCLONAL 3-17-A3  A prova permite detectar anticorpos para todos os serotipos conhecidos do vírus da febre catarral (VFC).  O fundamento da prova é a interrupção da reacção entre o antigénio do VFC e um anticorpo monoclonal específico de grupo (3-17-A3) por adição de soro de ensaio a diferentes diluições. Os anticorpos do VFC presentes no soro de ensaio bloqueiam a  reactividade do anticorpo monoclonal (AMC), o que origina uma redução do desenvolvimento esperado da cor resultante da adição de substrato enzimático.  MATERIAL E REAGENTES 1. Placas de microtítulo de fundo plano.  2. Antigénio: preparado conforme descrito.  3. Tampão de bloqueio: 5 % (p/v) pó de leite seco « Marvel », 0,1 % (v/v) Tween-20 (fornecido em xarope monolaurato de polioxietileno sorbitol) em sistema tampão fosfatado (STF).  4. Anticorpo monoclonal (AMC): 3-17-A3 (fornecido na forma de sobrenadante da cultura de tecidos de hibridoma), armazenado a  20° C ou liofilizado, diluído a 1/50 com um tampão de bloqueio antes da utilização, dirigido contra o polipeptido p7 específico  do grupo.  5. Conjugado: globulina de coelho anti-rato (adsorvida e eluída), conjugada com peroxidase de rábano silvestre e mantida ao abrigo da luz a 4° C.  6. Substrato e cromogénio: 0,2 g de ortofenileno diamina (OFD) dissolvidos num tampão que consiste em 2,553 g de ácido cítrico e 4,574 g de hidrogenortofosfato dissódico perfazendo até 500 ml com água destilada, dividido em alíquotas de 25 ml e mantido  ao abrigo da luz a  20° C; imediatamente antes da utilização, são adicionados 12 ml/25 ml de peróxido de hidrogénio (30 % p/v).  MANIPULAR CUIDADOSAMENTE O OFD - UTILIZAR LUVAS DE BORRACHA - SUSPEITA DE EFEITO MUTAGÉNICO 7. Ácido sulfúrico 1 molar: 26,6 ml de ácido, adicionados a 473,4 ml de água destilada.  NAO ESQUECER - ADICIONAR SEMPRE O ÁCIDO À ÁGUA, nunca a água ao ácido.  8. Agitador orbital.  9. Leitor de placa ELISA (a prova pode ser lida visualmente).  PROTOCOLO DE ENSAIO Controlo em branco A faixa 1, de A a H, representa um controlo em branco que compreende o antigénio do VFC e o conjugado. Pode ser utilizado para aferir o leitor ELISA.  Controlo do AMC A faixa 2, de A a H, representa o controlo do AMC e compreende o antigénio do VFC, o AMC e o conjugado. Trata-se de um controlo negativo. A média dos valores da densidade óptica desta faixa de controlo corresponde ao valor de inibição de 0 %.  Controlo positivo A faixa 3, de A a H, representa o controlo positivo. Compreende o antigénio do VFC, as diluições de antisoro positivo do VFC, o AMC e o conjugado. Trata-se de um indicador de que o ensaio está a decorrer com normalidade, devendo ser obtidos, de ensaio  para ensaio, níveis de inibição equivalentes.  Soros de ensaio No formato de ensaio atrás indicado podem ser ensaiados 18 soros com as diluições de 1/2, 1/4, 1/8 e 1/16. Obter-se-ao, desta forma, informações relativas ao título do anticorpo nos soros a ensaiar. A gama de diluições poderia ser alargada para obter  títulos finais de diluição do soro. Por outro lado, para estudos serológicos em grande escala, o soro pode ser ensaiado a uma única diluição (1/4) ou a duas diluições (1/2 e 1/4) como prova rápida de controlo.  TÉCNICA 1. Diluir o antigénio do VFC até à concentração pré-titulada em STF. Proceder à dissociação ultra-sónica para dispersar os agregados do vírus (não dispondo do aparelho necessário, pipetar vigorosamente) e adicionar 50 ml a todas as cavidades da placa  ELISA. Bater ligeiramente nos bordos da placa para dispersar o antigénio.  2. Incubar a 37 °C durante 60 minutos num agitador orbital. Lavar as placas passando-as três vezes por água e esvaziar as cavidades com STF não estéril e secar com um papel absorvente.  3. Adicionar 50 ml de tampão de bloqueio por cavidade. Adicionar os soros de ensaio e um soro positivo nas cavidades apropriadas e diluir o conteúdo da placa com a ajuda de uma pipeta de canais múltiplos. Não adicionar soro nem ao controlo em branco nem  ao controlo do AMC.  4. Imediatamente após a adição dos soros de ensaio, diluir o AMC em tampão de bloqueio (a uma diluição pré-titulada) e adicionar 50 ml a todas as cavidades da placa, excepto ao controlo em branco.  5. Incubar a 37 °C durante 60 minutos num agitador orbital. Lavar três vezes com STF e secar com um papel absorvente.  6. Diluir o concentrado de coelho anti-rato a 1/5 000 num tampão de bloqueio e adicionar 50 ml a todas as cavidades da placa.  7. Incubar a 37 °C durante 60 minutos num agitador orbital. Lavar três vezes com STF e secar com um papel absorvente.  8. Descongelar o OFD e, imediatamente antes da utilização, adicionar 12ml de peróxido de hidrogénio a 30 % por cada 25 ml de OFD. Adicionar 50 ml a todas as cavidades da placa. Aguardar que a cor se desenvolva durante aproximadamente 10 minutos e parar  a reacção com ácido sulfúrico 1 molar (50ml por cavidade). A cor deve-se desenvolver nas cavidades de controlo AMC e nas cavidades que contêm soros sem anticorpos do VFC.  9. Examinar e registar as placas, ou visualmente ou com recurso a um leitor espectrofotométrico.  ANÁLISE DOS RESULTADOS Calcular o valor médio da densidade óptica (DO) a partir dos controlos AMC. Esse valor representa o valor de inibição de 0 %. Os valores da densidade óptica dos soros a testar são expressos em valores de inibição percentuais e calculados por meio da  fórmula seguinte:  Valores de inibição percentuais = 100   DO na presença do soro de ensaio DO na ausência do soro de ensaio × 100 Os valores de inibição superiores a 40 % para uma diluição do soro a 1/4 são considerados positivos. A leitura visual é possível visto uma inibição de 40 % ser o mais baixo valor facilmente visível a olho nu.   PREPARAÇÃO DO ANTIGÉNIO DO VFC PARA O MÉTODO ELISA  1. Lavar três vezes dez roux de células BHK-21 confluentes com um meio « Eagle » isento de soro e infectar com o serotipo 1 do vírus da febre catarral num meio « Eagle » isento de soro.  2. Incubar a 37 °C e examinar diariamente o efeito citopatogénico (ECP).  3. Quando o ECP se tornar manifesto em 80 a 90 % da camada de células de cada roux, recolher o vírus por agitação, destacando as células aderentes ao vidro.  4. Centrifugar a 2 000 a 3 000 rpm (rotações por minuto) para agregar as células.  5. Eliminar a fracção sobrenadante e colocar novamente as células em suspensão em aproximadamente 30 ml de STF que contenha 1 % de « Sarkosyl » e 2 ml de fluoreto de fenolmetilsulfonil (tampão lise). Isto pode provocar uma gelificação das células,  podendo ser adicionado mais lise para reduzir esse efeito.  Nota: o fluoreto de fenolmetilsulfonil é uma substância perigosa; manipular com muito cuidado.  6. Proceder à dissociação das células durante 60 segundos utilizando uma sonda ultra-sónica a uma amplitude de 30 mícrons.  7. Centrifugar a 10 000 rpm durante 10 minutos.  8. Recolher a fracção sobrenadante a + 4 °C e colocar o agregado de células remanescente em 10 a 20 ml de lise.  9. Proceder à dissociação ultra-sónica e clarificar, recolher a fracção sobrenadante em cada fase, num total de três vezes.  10. Reunir as fracções sobrenadantes e centrifugar a 24 000 rpm durante 120 minutos a uma temperatura de + 4 °C sobre uma almofada de 5 ml de sucrose a 40 % (p/v em STF) utilizando tubos de centrifugação Beckmann de 30 ml e um rotor SW 28.  11. Eliminar a fracção sobrenadante, escorrer cuidadosamente os tubos e suspender novamente o agregado em STF por dissociação ultra-sónica. Recolher o antigénio em alíquotas a   70 °C.   TITULAÇÃO DO ANTIGÉNIO DO VFC PARA O MÉTODO ELISA  A titulação do antigénio da febre catarral para o método ELISA é feita pelo método indirecto ELISA. Titulação de diluições a 1/2 do antigénio contra uma diluição constante (1/50) de anticorpo monoclonal  3-17-A3. O protocolo é o seguinte:  TÉCNICA 1. Diluir o antigénio da VFC em STF ao longo de uma placa de microtítulo numa série de diluições a 1/2 (50 ml/cavidade) utilizando uma pipeta de canais múltiplos.  2. Incubar durante uma hora a 37 °C num agitador orbital.  3. Lavar três vezes as placas com STF.  4. Adicionar 50 ml de anticorpo monoclonal 3-17-A3 (diluído a 1/50) a cada uma das cavidades da placa de microtítulo.  5. Incubar durante uma hora a 37 °C num agitador orbital.  6. Lavar três vezes as placas com STF.  7. Adicionar 50 ml de globulina de coelho anti-rato conjugada com peroxidase de rábano silvestre, diluída numa concentração pré-titulada óptima, a cada cavidade da placa de microtítulo.  8. Incubar durante uma hora a 37 °C num agitador orbital.  9. Adicionar um substrato e um cromogénio como indicado atrás. Parar a reacção após 10 minutos por meio da adição de ácido sulfúrico 1 molar (50 ml por cavidade).  No ensaio competitivo, o anticorpo monoclonal deve encontrar-se em excesso, devendo por essa razão ser escolhida uma diluição de antigénio que se encontre na curva de titulação (e não na zona de planalto) que resulte numa densidade óptica de  aproximadamente 0,8 após 10 minutos.   Protocolo para uma prova de imunodifusão em ágar-gel para a detecção dos anticorpos da doença hemorrágica epizoótica  A prova de imunodifusão em ágar-gel é realizada de acordo com o protocolo seguinte:  MATERIAL E REAGENTES 1. Antigénio Preparar o antigénio, precipitando num sistema de cultura de células compatível com a multiplicação rápida serótipo(s) adequado(s) do vírus da doença epizoótica hemorrágica. São recomendadas as células BHK ou Vero. O antigénio está presente no fluido  sobrenadante no termo do crescimento do vírus, mas, para ser eficaz, a sua concentração deve ser 50 a 100 vezes superior. Esta concentração obtém-se através de qualquer método padrão de concentração de proteínas; o vírus do antigénio pode ser inactivado  por meio da adição de 0,3 % (v/v) de beta-propiolactona.  2. Soro de controlo positivo conhecido Utilizando o soro internacional de referência e antigénio, é produzido um soro-tipo nacional, padronizado para obtenção de uma proporção óptima relativamente ao soro internacional de referência, liofilizado e utilizado como o soro de controlo conhecido  em cada ensaio.  3. Soro de ensaio.  TÉCNICA 1. Deitar agarose a 1 % preparada num tampão de borato ou de barbitol de sódio, com um pH entre 8,5 e 9,0 numa placa de Petri a uma profundidade mínima de 3,0 mm.  2. Cria-se no ágar uma estrutura de sete cavidades isentas de humidade, cada uma com 5,0 mm de diâmetro. A estrutura consiste numa cavidade central e seis cavidades dispostas num círculo com um raio de 3 mm.  1 6 2 X 5 3 4 3. Preencher a cavidade central com o antigénio padrão. As cavidades circundantes 2, 4 e 6 são preenchidas com soro positivo e as 1, 3 e 5 com o soro de ensaio.  4. O sistema é colocado em incubação durante um período que pode ir até 72 horas à temperatura ambiente numa câmara húmida fechada.  INTERPRETAÇÃO Um soro de ensaio é positivo caso resulte na formação de uma linha de precipitina específica com o antigénio e numa linha de identidade total com o soro de controlo. O soro de ensaio é negativo caso se não forme uma linha específica e caso não deforme a  linha correspondente ao soro de controlo. As placas de Petri devem ser examinadas contra um fundo escuro e com uma iluminação indirecta.   


